1. 1)日本白色種雄ウサギ3匹を一週間以上予備飼育を行い、一般状態に異常がないことを確認。
2. 2)試験開始当日に、各試験動物の両眼の前眼部を検査し、異常のないことを確かめた。
3. 3)各試験動物の片眼結膜蓑内に検体（ナノオーラスプレー）を0.1ml点眼し、約1秒間上下眼瞼を緩やかに合わせ保持した。他眼は無処理の対照とした。
   点眼後1,24,48および72時間に、スリットランプ（x10)[興和株式会社]を用いて角膜・虹彩・結膜などの観察を行い、Draize法の基準に従って眼刺激性を採点した。なお、必要に応じてフルオレセインナトリウムを用いて、角膜上皮障害の有無と程度を詳細に観察した。
4. 4)得られた採点値を用いて各試験動物の合計評価を計算し、各観察時間ごとに3匹の平均合計評点を求めた。観察期間中の平均合計点の最高値から表1に示した基準に基づき検体の眼刺激性について評価を行った。

括弧内に対象眼の結果を示した

1. 1.発砲スチロール（ナノオーラコーティング）
2. 2.スポンジA 穴あき（ナノオーラコーティング）
3. 3.スポンジB 穴なし（ナノオーラコーティング）
4. 4.繊維（ナノオーラコーティング）
   1. 1)アンモニアのガスを調整（50リットル）
   2. 2)試供品3点（2,3,4）をテトラバッグ5リットルの中に入れ、粘着テープを用いて密封
   3. 3)試供品1はサイズが大きいのでテトラバック10リットルを使用
   4. 4)試供品3点（2,3,4）はアンモニアの調整ガス3リットルをテトラバッグの中に充填。試供品1はアンモニアの調整ガス10リットルをテトラバッグの中に充填。
   5. 5)紫外線 ブラックライト ナショナル殺菌灯GL-10を使用し、試供品より約15cm（2,3,4）約25cm（1）上部から紫外線照射。
   6. 6)最初から30分は暗室に放置、その後、紫外線照射。
   7. 7)スタート時、10分後、30分後、1時間後のアンモニア濃度を測定。

不検出=0.2ppm未満 単位ppm

一回目はナノオーラをPBSで1%懸濁液にしたが、十分PBSで懸濁できず1mm程度の沈殿物が存在したため、不活性率が低く出たと考えられる。2回目は粒子を均一化するため、ナノオーラを乳鉢で十分砕いた後、PBSで1%懸濁液を作製した。従って2回目の結果をまとめると、約300,000個のウィルスが、30分間1%ナノオーラ懸濁液と混合することで、約297,000個のウィルスが不活性化された。

30分で99.0%のウィルスが不活性化された。

1. 1)試験菌株 Escherichia coli(IFO3972) 大腸菌
2. 2)使用培地 MHB培地：Muller Hinton Broth(DIFCO)
   普通寒天培地デオキシコーレイト寒天培養地
3. 3)試験用菌液の調整試験菌株を普通寒天培地で2代継体後、MHB培地に接種し35℃、24時間培地し、滅菌生理食塩水で適宜希釈し、接種用菌液とした。
4. 4)試験操作
   1. 1.滅菌生理食塩水にそれぞれナノオーラを0.5%、1.0%となるように加え、試験用溶液とした。
   2. 2.試験用溶液に接種用菌液を加え、35℃において攪拌しながら培養を行った。またブランクとして、ナノオーラを加えないものについても同様に培養を行った。
   3. 3.2.で培養を行っている試験溶液を1分、5分、10分後の採取し、デオキシコーレイト寒天培地を用いて混釈法により大腸菌の菌数を求めた。